微生物燃料電池剛果紅同步脫色和產(chǎn)電性能研究

　　1 引言

　　微生物燃料電池(Microbial fuel cell，MFC)能在降解有機污染物的同時(shí)產(chǎn)生電能，是一種新概念的廢水處理方法(Logan et al., 2006a;2009).其原理為：陽(yáng)極微生物厭氧氧化有機物獲取電子，并將電子傳遞給陽(yáng)極，再通過(guò)外電路傳遞給陰極電子受體(如氧氣)，同時(shí)伴隨著(zhù)質(zhì)子由陽(yáng)極到陰極的跨膜擴散(Logan et al., 2006b).

　　陽(yáng)極微生物是影響MFC產(chǎn)電和降解性能的關(guān)鍵因素(Logan et al., 2008).宋天順等(2012)以氨氮模擬廢水為底物，分別以厭氧污泥和河底沉積物接種單室MFC陽(yáng)極，研究發(fā)現，厭氧污泥接種的MFC的最大功率密度比沉積物接種的MFC大46.8%，但氨氮去除率卻低3.8%.王慧勇等(2012)以模擬淀粉廢水為底物，比較了分別接種生活污水和淀粉廢水的MFC的性能，發(fā)現接種生活污水的MFC的最大功率密度比接種淀粉廢水的高141.3%，氨氮去除率高2.7%. Li等(2013)以廚余浸出液為底物，發(fā)現以厭氧污泥為接種源的MFC的最大功率密度比以生活污水為接種源的MFC低1.8%，但VFA去除率高5.5%;PCR-DGGE分析發(fā)現二者的優(yōu)勢菌種存在顯著(zhù)差異.可見(jiàn)，在相同的MFC構型和環(huán)境條件下，接種源的微生物多樣性與基質(zhì)的特異性決定了MFC陽(yáng)極微生物種群結構(Logan et al., 2006b;Pham et al., 2009)，從而可能影響了MFC的產(chǎn)電和降解性能(Aelterman et al., 2006).

　　理論上，在易降解有機物-難降解有機物共基質(zhì)體系中可馴化出能適應難降解有機物的菌種，基質(zhì)的選擇性壓力(Logan et al., 2006b)會(huì )改變MFC陽(yáng)極最初的微生物群落結構，富集出適應于代謝基質(zhì)的優(yōu)勢菌群(Logan，2009; Yang et al., 2012).因此，在課題組前期研究的基礎上(Sun et al., 2009a;2009b;Cao et al., 2010;Hou et al., 2011;Sun et al., 2011;2012)，為明確接種源對MFC同步降解剛果紅和產(chǎn)電的影響規律，本研究以葡萄糖-剛果紅為共基質(zhì)，以印染廢水和生活污水處理系統中的污泥為接種源，探究?jì)煞N接種源MFC同步降解剛果紅和產(chǎn)電性能情況;并通過(guò)分析陽(yáng)極生物膜電化學(xué)特性，分離并鑒定穩定運行下的MFC陽(yáng)極優(yōu)勢菌種，闡明兩種接種源MFC陽(yáng)極優(yōu)勢菌種差異與降解剛果紅和產(chǎn)電性能之間的關(guān)系，為基于接種源調控的MFC降解難降解有機物和產(chǎn)電提供借鑒.

　　2 材料與方法

　　2.1 試劑

　　剛果紅(C32H22N6O6S2Na2，分析純)，購于天津大茂化學(xué)試劑廠(chǎng)，使用前未經(jīng)純化處理.

　　2.2 反應器及其接種與運行

　　采用好氧生物陰極雙室MFC反應器(Hou et al., 2012)，取廣州市獵德污水處理廠(chǎng)和新洲工業(yè)園某印染廢水處理站的厭氧污泥各10 mL，混合后分別作為MFC-M和MFC-I(M、I分別為Municipal、Industrial的縮寫(xiě))陽(yáng)極的接種源，接種濃度為2.0 g · L-1(以MLSS計).從馴化到穩定運行階段，兩個(gè)反應器陽(yáng)極室培養液的組成均保持一致：剛果紅300 mg · L-1、葡萄糖200 mg · L-1、PBS 50 mmol · L-1、微量元素溶液12.5 mL · L-1、維生素溶液12.5 mL · L-1(Lovley et al., 1988).陰極室培養液中不含剛果紅和葡萄糖，其他成分與陽(yáng)極培養液相同.運行過(guò)程中，陰極室維持60 mL · min-1的曝氣量.采用批式運行，當輸出電壓值低于50 mV時(shí)更換培養液.

　　2.3 電化學(xué)性能表征

　　電化學(xué)性能表征包括輸出電壓、庫倫效率、功率密度、陰陽(yáng)極極化曲線(xiàn)、循環(huán)伏安和電化學(xué)阻抗譜.MFC的輸出電壓由數據采集系統(Model 2700，Keithly Instruments，USA)每10 min自動(dòng)采集1次.功率密度和陰陽(yáng)極極化曲線(xiàn)采用變電阻的方法在MFC經(jīng)過(guò)數周期運行穩定后進(jìn)行同步測試，電極電勢測定所用參比電極為飽和甘汞電極(SCE，0.242 V vs. 標準氫電極，上海雷磁).單位面積電流密度、功率密度及庫倫效率的計算公式(Logan et al., 2006a)如下：

　　式中，I為單位面積電流密度(mA · cm-2)，U為外電路電壓(V)，R為電阻(Ω)，A為電極面積(cm2)，P為單位面積功率密度(mW · m-2)，F為法拉第常數(C · mol-1)，VAn為陽(yáng)極室液體體積(cm3)，tb為周期時(shí)間(s)，ΔCOD為周期初與周期末的COD變化值(mg · L-1)，CE為庫倫效率.

　　循環(huán)伏安(CV)和電化學(xué)阻抗譜(EIS)的測定均在Princeton 2273型電化學(xué)工作站上進(jìn)行.當MFC開(kāi)路電壓達到穩定時(shí)，采用三電極體系進(jìn)行測試，其中，工作電極為陽(yáng)極，對電極為陰極，參比電極為飽和甘汞電極.循環(huán)伏安設置測試參數：掃描范圍為-0.7~1.2 V，掃描速率為10 mV · s-1.電化學(xué)阻抗譜設置測試參數：頻率范圍為100 kHz~5 mHz，交流電壓振幅為10 mV.

　　2.4 剛果紅脫色性能表征

　　剛果紅(初始濃度300 mg · L-1)脫色率由紫外可見(jiàn)光分光光度計(DR5000，HACH，USA)在其最大波長(cháng)(496 nm)下測定吸光度的減少值計算得到.在48 h內每隔6 h從MFC陽(yáng)極中取樣，稀釋后測定吸光度.脫色率η可由下式計算得到：

　　式中，A為初始吸光度，B為測試樣品吸光度.

　　脫色速率可由脫色率-時(shí)間曲線(xiàn)推算得出，由于脫色率隨時(shí)間增加會(huì )先呈現線(xiàn)性上升，在一定時(shí)間后脫色速率明顯降低、脫色率趨于穩定，為簡(jiǎn)化計算，平均脫色速率將直接采用近似線(xiàn)性部分的斜率進(jìn)行計算，具體公式為

　　式中，S為脫色速率(mg · L-1 · h-1)，C0為剛果紅初始濃度(mg · L-1)，t為線(xiàn)性部分終點(diǎn)時(shí)間，η為該時(shí)間點(diǎn)對應的脫色率.

　　采用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(GC-MS，6890 N/5973 inert，Agilent Technologies，USA)對MFC周期末的陽(yáng)極室降解液進(jìn)行產(chǎn)物分析.樣品處理及分析條件參考文獻(廖梅東等，2010).

　　2.5 優(yōu)勢菌種的分離、純化與鑒定

　　采用營(yíng)養瓊脂培養基(Nutrient agar，NA)(pH=7.0)作為純菌分離、純化的基礎培養基.在厭氧培養箱中，從穩定運行6個(gè)月以上的MFC-I和MFC-M的陽(yáng)極生物膜上刮下少許，用無(wú)菌去離子水稀釋到10-6倍后涂布平板，在(30±1)℃下的NA培養基中培養48 h.用新鮮的無(wú)菌NA培養基進(jìn)行重復轉移和純化，直到獲得純培養菌株.采用LB(Luria-Bertani)培養基(pH=7.0)作為富集純培養菌株的基礎培養基.所用培養基均通過(guò)多次抽真空和通氮氣以確保去除其中的氧氣.菌種委托寶生物工程(大連)有限公司采用16S rRNA基因序列進(jìn)行鑒定，使用BigDye�i Terminator V3.1 Cycle Sequencing Kit在A(yíng)BI-PRISMTM 3730XL DNA測序儀上進(jìn)行分析，在NCBI上的BLAST-n進(jìn)行比對(www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)分析核苷酸序列.

　　3 結果與討論

　　3.1 兩種接種源MFC的啟動(dòng)特點(diǎn)

　　在外接1000 Ω電阻的條件下，兩種接種源接種的MFC的輸出電壓隨時(shí)間的變化如圖 1所示.在接種后約800 h內(啟動(dòng)階段)，MFC-I和MFC-M的輸出電壓均表現出波動(dòng)上升趨勢，但MFC-I的輸出電壓略高于MFC-M.進(jìn)入穩定運行階段后，MFC-I和MFC-M的輸出電壓差別不大.

　　導致兩種接種源MFC啟動(dòng)初期電壓差別的原因在于剛果紅對微生物的選擇性壓力.印染廢水污泥中微生物長(cháng)期經(jīng)染料馴化，對剛果紅的適應性強，來(lái)自剛果紅的選擇性壓力較小;而生活污水污泥中的微生物首次接觸剛果紅，對剛果紅的適應性較差，來(lái)自剛果紅的選擇性壓力較大.但經(jīng)過(guò)一定時(shí)間的馴化后，生活污水污泥中的微生物對剛果紅的適應性增強，剛果紅的選擇性壓力減弱，從而使兩種接種源MFC穩定運行時(shí)的輸出電壓相當.

圖 1 兩種接種源MFC輸出電壓-時(shí)間曲線(xiàn)

　　3.2 兩種接種源MFC的產(chǎn)電性能

　　特定外電阻下的輸出電壓-時(shí)間曲線(xiàn)并不足以從整體描述MFC的產(chǎn)電性能.為探究不同外電阻下MFC-I和MFC-M產(chǎn)電性能的差異，采用變電阻法測試了兩個(gè)反應器的功率密度和極化曲線(xiàn).如圖 2a所示，穩定運行階段MFC-M的最大功率密度達到29.09 mW · m-2，比MFC-I高出2.11倍.陰、陽(yáng)極極化曲線(xiàn)測定結果表明，二者功率密度差異是由陽(yáng)極導致(圖 2b).MFC-I陽(yáng)極開(kāi)路電勢較MFC-M的高，且隨著(zhù)電流密度從0增加到0.015 mA · cm-2，MFC-I陽(yáng)極電勢較MFC-M的抬升幅度更高，表明在相同電流密度下，以印染廢水污泥接種的MFC-I對剛果紅-葡萄糖共基質(zhì)的生物電化學(xué)氧化需要更大的驅動(dòng)力(即能量需求更大)，陽(yáng)極過(guò)電勢越大，這與功率密度測定的結果一致.選擇運行1400 h后的3個(gè)穩定周期進(jìn)行庫倫效率的測定與計算，結果表明，MFC-M的庫倫效率(即電子的回收率)較高，達31.89%;而MFC-I的庫倫效率較低，為29.03%.

圖 2 穩定運行階段MFC-I和MFC-M的功率密度(a)與陰、陽(yáng)極極化曲線(xiàn)(b)

　　生活污水污泥接種的MFC-M產(chǎn)電性能更好，主要原因在于生活污水成分復雜，其污泥中微生物多樣性豐富，包含的產(chǎn)電菌較多(Logan，2009;Yang et al., 2012);而印染廢水污泥在染料的長(cháng)期馴化下微生物種群相對單一，染料降解菌較多.此外，剛果紅的降解與產(chǎn)電是電子競爭過(guò)程，相對于陽(yáng)極，剛果紅優(yōu)先獲得電子(Sun et al., 2012)，MFC-I中較多的染料降解菌能競爭到更多的電子用于染料脫色，導致傳遞給陽(yáng)極的電子減少，陽(yáng)極極化明顯.

　　3.3 兩種接種源MFC陽(yáng)極剛果紅的降解速率和降解產(chǎn)物分析

　　穩定運行階段，MFC-I和MFC-M對剛果紅的脫色率隨時(shí)間變化如圖 3所示.在運行周期初的12 h內，MFC-I(16.24 mg · L-1 · h-1)的平均脫色速率比MFC-M(13.50 mg · L-1 · h-1)高20.3%;12 h后脫色速率均明顯降低，MFC-I(4.69 mg · L-1 · h-1)的平均脫色速率比MFC-M(4.10 mg · L-1 · h-1)高14.4%;在48 h內，MFC-I在任一時(shí)間點(diǎn)對剛果紅的脫色率均比MFC-M高出4%~20%.這是由于印染廢水污泥在染料的長(cháng)期馴化下微生物多樣性相對單一，其功能傾向于優(yōu)先降解染料;結合產(chǎn)電性能比較，可從側面驗證了因剛果紅降解與產(chǎn)電爭奪電子導致的產(chǎn)電性能差異.48 h后，MFC-M和MFC-I對剛果紅的脫色率均達到90%以上，說(shuō)明在剛果紅的長(cháng)期馴化后，兩種接種源對反應器的最終脫色率差異不大.

圖 3 穩定運行階段兩種接種源MFC對剛果紅的脫色率-時(shí)間曲線(xiàn)

　　兩種接種源MFC陽(yáng)極的剛果紅脫色產(chǎn)物分析如圖 4和圖 5所示.從色譜峰的出峰時(shí)間和峰強度來(lái)看，MFC-I和MFC-M中剛果紅脫色產(chǎn)物相同且濃度相當，主要有3種物質(zhì)：2-氨基-1，4-萘醌(15.394 min)、2，2′-二氨基聯(lián)苯(16.345 min)、4，4′-二氨基聯(lián)苯(也稱(chēng)為聯(lián)苯胺，17.861 min)，這與孫健等的研究結果一致(Sun et al., 2012).這說(shuō)明在剛果紅-葡萄糖共基質(zhì)環(huán)境下長(cháng)期運行，兩種接種源MFC對剛果紅的降解產(chǎn)物和降解效率差異很小.

圖 4 穩定運行階段周期末MFC-I(a)和MFC-M(b)陽(yáng)極脫色產(chǎn)物氣相色譜圖

圖 5 穩定運行階段周期末MFC-I和MFC-M陽(yáng)極脫色產(chǎn)物質(zhì)譜圖(a.2-氨基-1，4-萘醌，b.2，2′-二氨基聯(lián)苯，c.聯(lián)苯胺)

　　3.4 生物膜電化學(xué)特性

　　CV被廣泛用于研究MFC中細菌與電極表面的電化學(xué)交互作用機制(Rabaey et al., 2004;2005;Marsili et al., 2008).為了探究長(cháng)期運行下，兩種接種源MFC陽(yáng)極生物膜與電極表面之間的電化學(xué)反應特性差異，對穩定運行階段最大輸出電壓時(shí)和周期末(電壓低于10 mV，基質(zhì)幾乎消耗完全)的MFC陽(yáng)極進(jìn)行了CV掃描.

　　如圖 6a所示，最大輸出電壓下，MFC-I和MFC-M陽(yáng)極的CV中均呈現出一對明顯的氧化還原峰，分別為-0.41 V的氧化峰和0.52 V的還原峰(MFC-M)，以及為-0.31 V的氧化峰和0.66 V的還原峰(MFC-I)，但MFC-I氧化還原峰的位置均比MFC-M有些許偏移.這說(shuō)明二者陽(yáng)極表面發(fā)生氧化還原化學(xué)反應的物質(zhì)不同，可能是兩種接種源生物膜中微生物種群的差異所致(Marsili et al., 2008).同時(shí)，由圖 6a可看出，MFC-M的氧化還原峰面積及峰高均明顯大于MFC-I，說(shuō)明MFC-M生物膜具有更高的電化學(xué)活性(Carmona-Martinez et al., 2011).由圖 6b可以看出，與最大電壓下(圖 6a)的CV圖相比，周期末CV圖的氧化還原峰的峰高明顯減小，這是共基質(zhì)耗盡的結果.此外，氧化還原特征峰發(fā)生了不同程度的偏移，參考Rabaey等(2004)的研究，推測是剛果紅脫色產(chǎn)物在陽(yáng)極表面進(jìn)一步氧化降解所致.

圖 6 穩定運行階段最大電壓時(shí)(a)和周期末(b)MFC-I和MFC-M陽(yáng)極的循環(huán)伏安曲線(xiàn)

　　CV和GC-MS檢測發(fā)現，在MFC-M和MFC-I 周期末CV圖中，電壓約為0.747 V時(shí)，均出現了峰電流約為16.3 mA的還原峰，其標準還原電位約為-0.201 V;結合GC-MS分析結果推測該峰為生物膜細菌產(chǎn)生的電子氧化還原介體之一的2-氨基—1，4-萘醌的特征峰(Rau et al., 2002;Fultz et al., 1982).2-氨基—1，4-萘醌的標準氧化還原電位高于細胞脫氫酶NDAH的氧化還原電位值(-0.320 V，Rau et al., 2002)，但低于陽(yáng)極電勢(約為-0.100 V)和剛果紅標準氧化還原電勢(+0.102 V)，說(shuō)明2-氨基-1，4-萘醌可作為電子介體協(xié)助電子由細胞到陽(yáng)極和剛果紅分子的傳遞.其次，至今發(fā)現的醌類(lèi)電子介體及其標準氧化還原電位已有2-氨基—3-羧基—1，4-萘醌(-0.071 V)、2-羥基—1，4-萘醌(-0.137 V)、1，2-萘醌(+0.135 V)、1，2-萘醌—4-磺酸(+0.217 V)(Yamazaki et al., 1999;Rau et al., 2002;Fultz et al., 1982;dos Santos et al., 2007)，產(chǎn)物中擁有萘醌結構的2-氨基—1，4-萘醌的標準氧化還原電位約為-0.201 V，與其他醌類(lèi)電子介體的標準氧化還原電位相近.最后，根據Nortemann等(1994)的研究發(fā)現，醌類(lèi)電子介體是在Pseudomonas sp. BN6降解萘磺酸鹽的過(guò)程中由微生物代謝得到的.剛果紅與萘磺酸鹽同樣有醌類(lèi)基團，且陽(yáng)極優(yōu)勢菌種也以Pseudomonas sp.為主(見(jiàn)3.5節).由此推斷，Pseudomonas sp.在代謝剛果紅的過(guò)程中，使其斷鍵生成2-氨基—1，4-萘醌，而2-氨基—1，4-萘醌作為電子介體可進(jìn)一步促進(jìn)氧化還原反應的進(jìn)行.

　　采用EIS測定了兩種接種源MFC陽(yáng)極在最大電壓時(shí)的阻抗，其能斯特曲線(xiàn)如圖 7所示，阻抗分析見(jiàn)表 1.圖 7中，曲線(xiàn)高頻部分與X軸的交點(diǎn)對應值為歐姆阻抗Rs，從高頻到低頻得到半圓的擬合直徑為極化阻抗Rct.由表 1可看出，MFC-I和MFC-M陽(yáng)極的Rs和Rd均較小(約3~5 Ω)，因此，陽(yáng)極阻抗主要由表征電子傳遞速率的極化阻抗Rct導致.如圖 7和表 1所示，在輸出電壓最大時(shí)，MFC-M陽(yáng)極Rct比MFC-I陽(yáng)極低38.0%，說(shuō)明MFC-I的陽(yáng)極電子供應不足或電子傳遞阻力較大，這與測得的陽(yáng)極極化曲線(xiàn)一致.因為MFC-I中染料脫色菌較多，加速了剛果紅脫色，消耗了大量來(lái)自共基質(zhì)葡萄糖的電子，致使傳遞給陽(yáng)極的電子急劇減少.

圖 7 最大電壓時(shí)MFC-I和MFC-M陽(yáng)極的能斯特曲線(xiàn)(Zre為阻抗Z的實(shí)部，Zim為阻抗Z的虛部)

 表1 穩定運行階段最大電壓時(shí)MFC-I和MFC-M陽(yáng)極的內阻分析

 　　3.5 兩種接種源的MFC陽(yáng)極優(yōu)勢菌種分析

　　從MFC-M和MFC-I陽(yáng)極各分離出3株純菌，分別命名為M-P、M-P2、M-B和I-P、I-P2、I-A，繪制系統發(fā)育樹(shù)如圖 8所示.由圖可知，MFC-M的優(yōu)勢菌為Pseudomonas sp.(M-P、M-P2)和Bacillus sp.(M-B);MFC-I的優(yōu)勢菌為Pseudomonas sp.(I-P、I-P2)和Aquamicrobium sp(I-A).其中，I-P和M-P、I-P2和M-P2、I-P和I-P2、M-P和M-P2、I-A和I-P、I-A和M-B、M-B和M-P的同源相似性分別為100%、99%、99%、99%、83%、81%、80%.可見(jiàn)，在一定的環(huán)境條件下，接種源微生物多樣性與特征基質(zhì)決定了MFC陽(yáng)極優(yōu)勢菌種.

圖 8 MFC-I和MFC-M陽(yáng)極生物膜上優(yōu)勢菌種的系統發(fā)育樹(shù)

　　在同步降解剛果紅與產(chǎn)電MFC中的微生物一般可分為兩種：①產(chǎn)電菌，主要負責傳遞電子到電極;②剛果紅降解菌，主要負責降解剛果紅及其脫色產(chǎn)物(Sun et al., 2012).Pseudomonas sp.和Bacillus sp.均為最常見(jiàn)的產(chǎn)電菌屬.其中，Pseudomonas sp.能分泌電子介體(如綠膿菌素)，加速電子由細胞表面到陽(yáng)極表面的傳遞，并且這類(lèi)生物型電子介體還可被其他細菌利用，進(jìn)行種間電子傳遞，增大MFC輸出功率(Rabaey et al., 2004，2005;Logan et al., 2009).而B(niǎo)acillus sp.在MFC中主要借助溶解性電子介體傳遞電子(Nimje et al., 2009).同時(shí)，Pseudomonas sp.和Bacillus sp.也是常見(jiàn)的染料降解菌(Cervantes et al., 2011;Jain et al., 2012).故可以判斷MFC-M在產(chǎn)電和剛果紅降解方面的高效性能歸功于同為產(chǎn)電菌和染料降解菌的優(yōu)勢菌種Pseudomonas sp.和Bacillus sp..從圖 8中可以看出，在MFC-I中也分離出了與MFC-M中同源性較高的Pseudomonas sp..此外，關(guān)于A(yíng)quamicrobium sp.雖然在MFC領(lǐng)域中的應用雖然鮮有報道，但已發(fā)現其能夠代謝雜環(huán)化合物噻吩-2-甲酸叔丁酯(Bambaue et al., 1998)、聯(lián)苯和聚氯聯(lián)苯(Chang et al., 2013)，因此，極有可能具有降解剛果紅的能力.具體參見(jiàn)污水寶商城資料或http://www.sharpedgetext.com更多相關(guān)技術(shù)文檔。

　　綜上分析可以初步判斷，兩種接種源MFC陽(yáng)極均存在產(chǎn)電菌和剛果紅降解菌，但由于各優(yōu)勢菌屬的剛果紅降解與產(chǎn)電途徑和能力的差異，從而導致了二者在同步降解剛果紅與產(chǎn)電過(guò)程中功率密度、剛果紅脫色速率和生物膜電化學(xué)活性的差異.

　　1)分別以印染廢水污泥和生活污水污泥接種MFC，研究發(fā)現，接種源會(huì )影響MFC的產(chǎn)電性能.啟動(dòng)階段，MFC-I的輸出電壓高于MFC-M;但穩定運行階段，二者最大輸出電壓差別不大.穩定運行階段MFC-M最大功率密度比MFC-I高2.11倍，陽(yáng)極Rct比MFC-I低38.0%，生物膜電化學(xué)活性更強.

　　2)接種源同時(shí)會(huì )影響MFC對剛果紅的脫色性能，但對剛果紅的降解產(chǎn)物沒(méi)有影響.MFC-I對剛果紅的脫色速率比MFC-M高14.4%~20.3%，主要降解產(chǎn)物均為2-氨基—1，4-萘醌、2，2′-二氨基聯(lián)苯、4，4′-二氨基聯(lián)苯.

　　3)接種源還會(huì )導致MFC陽(yáng)極優(yōu)勢菌種的差異.二者均存在Pseudomonas sp.，但MFC-M陽(yáng)極還存在優(yōu)勢菌Bacillus sp.，而MFC-I的陽(yáng)極還存在優(yōu)勢菌Aquamicrobium sp.